Цитологическое исследование мазков (соскобов) с поверхности шейки матки (наружного маточного зева) и

Интраэпителиальные поражения шейки матки низкой степени риска у беременных женщин с впч и нарушениями биоценоза влагалища

Бебнева Т.Н., Дикке Г.Б.

Ключевые слова

Список литературы

1. Hong Y., Li S.Q., Hu Y.L., Wang Z.Q. Survey of human papillomavirus types and their vertical transmission in pregnant women. BMC Infect. Dis. 2013; 13: 109. doi: 10.1186/1471-2334-13-109.

2. Liu P., Xu L., Sun Y., Wang Z. The prevalence and risk of human papillomavirus infection in pregnant women. Epidemiol. Infect. 2014; 142(8): 1567–78. doi: 10.1017/S0950268814000636.

3. Salcedo M.M., Damin A.P., Agnes G., Pessini S.A., Beitune P.E., Alexandre C.O. et al. Prevalence of human papillomavirus infection in pregnant versus non-pregnant women in Brazil. Arch. Gynecol. Obstet. 2015; 292(6): 1273-8. doi: 10.1007/s00404-015-3752-8.

4. Domža G., Gudlevičienė Z., Didžiapetrienė J., Valuckas K.P., Kazbarienė B., Drąsutienė G. Human papillomavirus infection in pregnant women. Arch. Gynecol. Obstet. 2011; 284(5): 1105-12. doi: 10.1007/s00404-010-1787-4.

5. Бебнева Т.Н., Дикке Г.Б. Рецидивирующие нарушения биоценоза влагалища, ассоциированные с бактериальным вагинозом, у беременных женщин с ВПЧ-инфекцией. Акушерство и гинекология. 2018; 9: 52-8.

6. Cubo-Abert M., Centeno-Mediavilla C., Franco-Zabala P., Merced-Vázquez C., Castellví J., García A. et al. Risk factors for progression or persistence of squamous intraepithelial lesions diagnosed during pregnancy. J. Low. Genit. Tract Dis. 2012; 16(1): 34-8. doi: 10.1097/LGT.0b013e31822e83cf.

7. Бебнева Т.Н. Цитологические и кольпоскопические особенности шейки матки у беременных с персистирующей папилломавирусной инфекцией. Доктор.Ру. 2015; Приложение 2: 10-3.

8. Xavier-Júnior J.C., Dufloth R.M., do Vale D.B., Tavares T.A., Zeferino L.C. High-grade squamous intraepithelial lesions in pregnant and non-pregnant women. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2014; 175: 103-6. doi: 10.1016/j.ejogrb.2014.01.018.

9. Origoni M., Salvatore S., Perino A., Cucinella G., Candiani M. Cervical Intraepithelial Neoplasia (CIN) in pregnancy: the state of the art. Eur. Rev. Med. Pharmacol. Sci. 2014; 18(6): 851-60.

10. Mitra A., Mac Intyre D.A., Lee Y.S., Smith A., Marchesi J.R., Lehne B. et al. Cervical intraepithelial neoplasia disease progression is associated with increased vaginal microbiome diversity. Sci. Rep. 2015; 5: 16865. doi: 10.1038/srep16865. Available at: https://www.nature.com/articles/srep16865

11. Kero K., Rautava J., Syrjänen K., Grenman S., Syrjänen S. Association of asymptomatic bacterial vaginosis with persistence of female genital human papillomavirus infection. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2017; 36(11): 2215-19. doi: 10.1007/s10096-017-3048-y.

12. Mitra A., MacIntyre D., Lee Y., Smith A., Marchesi J., Lehne B. et al. Characterisation of the vaginal microbiome in cervical intraepithelial neoplasia. Lancet. 2016; 387(Special Issue): S75. doi: 10.1016/S0140-6736(16)00462-1.

13. Gillet E., Meys J.F., Verstraelen H., Bosire C., De Sutter P., Temmerman M., Broeck D.V. Bacterial vaginosis is associated with uterine cervical human papillomavirus infection: a meta-analysis. BMC Infect. Dis. 2011; 11: 10. doi: 10.1186/1471-2334-11-10.

14. Zodzika J., Jermakowa I., Rezeberga D., Vasina O., Vedmedovska N., Donders G.G. Factors related to elelvated vaginal pH in the first trimester of pregnancy. Acta Obstet. Gynecol. Scand. 2011; 90: 41-6. doi: 10.1111/j.1600-0412.2010.01011.x.

15. Donders G., Bellen G., Rezeberga D. Aerobic vaginitis in pregnancy. BJOG. 2011; 118(10): 1163-70. doi: 10.1111/j.1471-0528.2011.03020.x.

16. Sangeetha K.T., Saroj Golia, Vasudha C.L. A study of aerobic bacterial pathogens associated with vaginitis in reproductive age group women (15–45 years) and their sensitivity pattern. Int. J. Res. Med. Sci. 2015; 3(9): 2268-73. doi: 10.18203/2320-6012.ijrms20150615.

17. Rathod S.D., Klausner J.D., Krupp K., Reingold A.L., Madhivanan P. Epidemiologic features of vulvovaginal candidiasis among reproductive-age women in India. Infect. Dis. Obstet. Gynecol. 2012; 2012: ID 859071. doi: 10.1155/2012/859071.

18. Kalantari N., Ghaffari S., Bayani M. Trichomonas, Candida and Gardnerella in cervical smears of Iranian women for cancer screening. N. Am. J. Med. Sci. 2014; 6(1): 25–9. doi: 10.4103/1947-2714.125861.

19. Kone E.S., Balili A.D., Paparisto P.D., Ceka X.R., Petrela E.D. Vaginal infections of Albanian women infected with HPV and their impact in intraepithelial cervical lesions evidenced by Pap test. J. Cytol. 2017; 34(1): 16-21. doi: 10.4103/0970-9371.197592.

20. Lu H., Jiang P.C., Zhang X.D., Hou W.J., Wei Z.H., Lu J.Q. et al. Characteristics of bacterial vaginosis infection in cervical lesions with high risk human papillomavirus infection. Int. J. Clin. Exp. Med. 2015; 8(11):21080-8.

21. Ghosh I., Mandal R., Kundu P., Biswas J. Association of genital infections other than human papillomavirus with pre-invasive and invasive cervical neoplasia. J. Clin. Diagn. Res. 2016; 10(2): XE01-6. doi: 10.7860/JCDR/2016/15305.7173.

22. Tao L., Han L., Li X., Gao Q., Pan L., Wu L. et al. Prevalence and risk factors for cervical neoplasia: a cervical cancer screening program in Beijing. BMC Public Health. 2014; 14: 1185. doi: 10.1186/1471-2458-14-1185.

23. Kiseki H., Tsukahara Y., Tajima N., Tanaka A., Horimoto A., Hashimura N. Influence of co-infection complicated with human papillomavirus on cervical intraepithelial neoplasia development in patients with atypical squamous cells of undetermined significance. J. Infect. Chemother. 2017; 23(12): 814-9. doi: 10.1016/j.jiac.2017.08.008.

Читайте также:  Кальций при беременности когда пить и как принимать беременным

24. Rodriguez-Cerdeira C., Sanchez-Blanco E., Alba A. Evaluation of association between vaginal infections and high-risk human papillomavirus types in female sex workers in Spain. ISRN Obstet. Gynecol. 2012; 2012: 240190. doi: 10.5402/2012/240190.

25. Ramirez-Garcia A., Rementeria A., Aguirre-Urizar J.M., Moragues M.D., Antoran A., Pellon A. et al. Candida albicans and cancer: Can this yeast induce cancer development or progression? Crit. Rev. Microbiol. 2016; 42(2): 181-93. doi: 10.3109/1040841X.2014.913004.

26. Di Paola M., Sani C., Clemente A.M., Iossa A., Perissi E., Castronovo G. et al. Characterization of cervico-vaginal microbiota in women developing persistent high-risk human papillomavirus infection. Sci. Rep. 2017; 7(1): 10200. doi: 10.1038/s41598-017-09842-6.

27. Guo Y.L., You K., Qiao J., Zhao Y.M., Geng L. Bacterial vaginosis is conducive to the persistence of HPV infection. Int. J. STD AIDS. 2012; 23(8): 581-4. doi: 10.1258/ijsa.2012.011342.

28. Mongelos P., Mendoza L.P., Rodriguez-Riveros I., Castro A., Gimenez G., Araujo P. et al. Distribution of human papillomavirus (HPV) genotypes and bacterial vaginosis presence in cervical samples from Paraguayan indigenous. Int. J. Infect. Dis. 2015; 39: 44-9. doi: 10.1016/j.ijid.2015.08.007.

29. Ovestad I.T., Gudlaugsson E., Skaland I., Malpica A., Munk A.C., Janssen E.A., Baak J.P. The impact of epithelial biomarkers, local immune response and human papillomavirus genotype in the regression of cervical intraepithelial neoplasia grades 2–3. J. Clin. Pathol. 2011; 64(4): 303-7. doi: 10.1136/jcp.2010.083626.

30. Sodhani P., Gupta S., Gupta R., Mehrotra R. Bacterial vaginosis and cervical intraepithelial neoplasia: is there an association or is co-existence incidental? Asian Pac. J. Cancer Prev. 2017; 18(5): 1289-92. doi: 10.22034/APJCP.2017.18.5.1289.

31. Oh H.Y., Kim B.S., Seo S.S., Kong J.S., Lee J.K., Park S.Y. et al. The association of uterine cervical microbiota with an increased risk for cervical intraepithelial neoplasia in Korea. Clin. Microbiol. Infect. 2015; 21(7): 674. e1-9. doi: 10.1016/j.cmi.2015.02.026.

32. Palma E., Recine N., Domenici L., Giorgini M., Pierangeli A., Panici P.B. Long-term Lactobacillus rhamnosus BMX 54 application to restore a balanced vaginal ecosystem: a promising solution against HPV-infection. BMC Infect. Dis. 2018; 18: 13. doi: 10.1186/s12879-017-2938-z.

33. Роговская С.И., Теребнева Л.И. Клинические аспекты плоскоклеточных интраэпителиальных поражений низкой степени. Акушерство и гинекология. 2013; 2: 136-43.

34. Савельева Г.М., Сухих Г.Т., Серов В.Н., Радзинский В.Е., ред. Акушерство. Национальное руководство. 2-е изд. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2015. 1080с.

35. Бебнева Т.Н., Дикке Г.Б. Коррекция рецидивирующих нарушений биоценоза влагалища у беременных, инфицированных вирусом папилломы человека. Акушерство и гинекология: новости, мнения, обучение. 2018; 3: 38-46.

36. World Health Organization. WHO guidelines for the treatment of Chlamydia trachomatis. Geneva: World Health Organization; 2016. 47р.

37. Bradshaw C.S., Sobel J.D. Current treatment of bacterial vaginosis-limitations and need for innovation. J. Infect. Dis. 2016; 214(Suppl. 1): S14-20. doi: 10.1093/infdis/jiw159.

38. Sherrard1 J., Donders G., White D., Jensen J.S. European (IUSTI/WHO) guideline on the management of vaginal discharge. 2011. 23р. Available at: http://www.iusti.org/

39. Бальмер Дж.А. и Группа мультицентрового исследования (Мультицентровое Европейское исследование) Макмирор комплекс в лечении вульвовагинитов, вызванных смешанной грибковой, бактериальной и трихомонадной инфекцией. Провизор. 2001; 19: 32-3.

40. Захарова Т.В., Волков В.Г. Опыт лечения бактериального вагиноза, ассоцированного с кандидозным вульвовагинитом. Акушерство и гинекология. 2016; 11: 131-5. doi: 10.18565/aig.2016.11.131-5.

41. Сергиенко Г.С., Тазина Т.В., Жучков М.В. Возможности вагинального крема, содержащего клиндамицин и бутоконазол, в уменьшении риска рецидива урогенитального кандидоза у коморбидных пациенток с бактериальным вагинозом. Гинекология. 2018; 20(1): 68-70.

42. Тихомиров А.Л., Сарсания С.И., Тускаев К.С. Актуальность применения повидон-йода в практике акушера-гинеколога. РМЖ. Мать и дитя. 2014; 22(1): 50-3.

43. Додова Е.Г., Аполихина И.А., Горбунова Е.А., Бородина Е.А. Комплексное лечение воспалительных заболеваний нижних отделов генитального тракта у женщин. Акушерство и гинекология. 2015; 6: 129-35.

44. Mendling W., Weissenbacher E.R., Gerber S., Prasauskas V., Grob P. Use of locally delivered dequalinium chloride in the treatment of vaginal infections: a review. Arch. Gynecol. Obstet. 2016; 293(3): 469-84. doi: 10.1007/s00404-015-3914-8.

45. Verstraelen H., Verhelst R., Roelens K., Temmerman M. Antiseptics and disinfectants for the treatment of bacterial vaginosis: a systematic review. BMC Infect. Dis. 2012; 12: 148. doi: 10.1186/1471-2334-12-148.

Цитологическая диагностика заболеваний шейки матки

Цитологическое исследование мазков из шейки матки позволяет оценить состояние слизистой оболочки, наличие или отсутствие признаков патологических процессов (реактивных, предопухолевых, опухолей). При выявлении другими лабораторными методами инфекционного агента (вирус папилломы человека, бактериальные и паразитарные инфекции), цитологический метод позволяет оценить реакцию организма на инфекционный агент, наличие или отсутствие признаков повреждения, пролиферации, метаплазии или трансформации эпителия. Возможно также при исследовании мазка определить причину изменений эпителия (наличие воспаления с ориентировочным или уверенным определением патогенной микробиоты (микрофлоры), патологических процессов, связанных с гормональным, лекарственным, механическим, лучевым воздействием на организм женщины и шейку матки, состояний, чреватых опасностью возникновения дисплазии и рака шейки матки, а при их развитии установить правильный диагноз. В связи с этим цитологическое исследование применяют как при скрининге (мазки с визуально нормальной шейки матки), так и при наличии видимых при гинекологическом осмотре изменений слизистой оболочки.

Получение материала

Рак шейки матки чаще всего развивается в зоне трансформации, ему предшествуют фоновые процессы и внутриэпителиальные поражения (дисплазия эпителия), которые могут располагаться на небольших участках, поэтому важно, чтобы материал был получен со всей поверхности шейки матки, особенно из зоны стыка плоского и цилиндрического эпителия. Число измененных клеток в мазке бывает различным, и если их мало, то увеличивается вероятность, что патологические изменения могут быть пропущены при просмотре препарата. Для эффективного цитологического исследования необходимо учитывать:

  • при профилактических осмотрах цитологические мазки следует брать у женщин независимо от жалоб, наличия или отсутствия изменений слизистой оболочки. Цитологическое исследование следует повторять не реже, чем раз в три года;
  • желательно получать мазки не ранее, чем на 5-е сутки менструального цикла и не позднее, чем за 5 суток до предполагаемого начала менструации;
  • нельзя брать материал в течение 48 ч после полового контакта, использования любрикантов, раствора уксуса или Люголя, тампонов или спермицидов, спринцевания, введения во влагалище медикаментов, свечей, кремов, в т. ч. кремов для выполнения ультразвукового исследования;
  • беременность – не лучшее время для скрининга, так как возможны неправильные результаты, но, если нет уверенности, что женщина придет на обследование после родов, лучше мазки взять;
  • при симптомах острой инфекции желательно получать мазки с целью обследования и выявления патологических изменений эпителия, этиологического агента; также необходим цитологический контроль после лечения, но не ранее, чем через 2 мес. после окончания курса.
Читайте также:  Проблема отцов и детей Педагогический портал «Тривиум»

Материал из шейки матки должен брать врач-гинеколог или (при скрининге, профилактическом осмотре) хорошо обученная медицинская сестра (акушерка).

Важно, чтобы в мазок попадал материал из зоны трансформации, так как около 90% опухолей исходит из зоны стыка плоского и цилиндрического эпителия и зоны трансформации и только 10% из цилиндрического эпителия цервикального канала.

С диагностической целью материал получают раздельно из эктоцервикса (влагалищной порции шейки матки) и эндоцервикса (цервикального канала) с помощью шпателя и специальной щетки (типа Cytobrush). При проведении профилактического осмотра используют Cervex-Brush, различные модификации шпателя Эйра и другие приспособления для получения материала одновременно из влагалищной части шейки матки, зоны стыка (трансформации) и цервикального канала.

Перед получением материала шейку матки обнажают в “зеркалах”, дополнительных манипуляций не проводят (шейку не смазывают, слизь не удаляют; если слизи много – ее аккуратно снимают ватным тампоном, не надавливая на шейку матки.). Щетку (шпатель Эйра) вводят в наружный зев шейки матки, осторожно направляя центральную часть приспособления по оси цервикального канала. Далее ее наконечник поворачивают на 360° (по часовой стрелке), достигая тем самым получения достаточного числа клеток из эктоцервикса и из зоны трансформации. Введение инструмента выполняют очень бережно, стараясь не повредить шейку матки. Затем щетку (шпатель) выводят из канала.

Приготовление препаратов

Перенос образца на предметное стекло (традиционный мазок) должен происходить быстро, без подсушивания и потери прилипших к инструменту слизи и клеток. Обязательно перенести на стекло материал с обеих сторон шпателя или щетки.

Если предполагается приготовление тонкослойного препарата с помощью метода жидкостной цитологии, головку щетки отсоединяют от ручки и помещают в контейнер со стабилизирующим раствором.

Фиксация мазков выполняется в зависимости от предполагаемого метода окрашивания.

Окрашивание по Папаниколау и гематоксилин-эозином наиболее информативны в оценке изменений эпителия шейки матки; любая модификация метода Романовского несколько уступает этим методам, однако при наличии опыта позволяет правильно оценить и характер патологических процессов в эпителии и микрофлору.

Клеточный состав мазков представлен слущенными клетками, находящимися на поверхности эпителиального пласта. При адекватном получении материала с поверхности слизистой оболочки шейки матки и из цервикального канала в мазок попадают клетки влагалищной порции шейки матки (многослойный плоский неороговевающий эпителий), зоны стыка или трансформации (цилиндрический и, при наличии плоскоклеточной метаплазии, метаплазированный эпителий) и клетки цервикального канала (цилиндрический эпителий). Условно клетки многослойного плоского неороговевающего эпителия принято делить на четыре типа: поверхностные, промежуточные, парабазальные, базальные. Чем лучше выражена способность эпителия к созреванию, тем более зрелые клетки попадают в мазок. При атрофических изменениях на поверхности эпителиального пласта расположены менее зрелые клетки.

Интерпретация результатов цитологического исследования

Наиболее распространенная в настоящее время – классификация Bethesda (The Bethesda System), разработанная в США в 1988 г, в которую вносили несколько изменений. Классификация создана для более эффективной передачи информации из лаборатории врачам клинических специальностей и обеспечения стандартизации лечения диагностированных нарушений, а также последующего наблюдения за больными.

В классификации Bethesda выделяют плоскоклеточные интраэпителиальные поражения низкой и высокой степени (squamous intraepithelial lesions of low grade and high grade – LSIL и HSIL) и инвазивный рак. Плоскоклеточные интраэпителиальные поражения низкой степени включают изменения, связанные с папилломавирусной инфекцией и слабой дисплазией (CIN I), высокой степени – умеренную дисплазию (CIN II), тяжелую дисплазию (CIN III) и внутриэпителиальный рак (cr in situ). В этой классификации имеются также указания на специфические инфекционные агенты, вызывающие заболевания, передавае мые половым путем.

Для обозначения клеточных изменений, которые трудно дифференцировать между реактивными состояниями и дисплазией предложен термин ASCUS – atypical squamous cells of undetermined significance (клетки плоского эпителия с атипией неясного значения). Для клинициста этот термин мало информативен, однако он нацеливает врача на то, что данная пациентка нуждается в обследовании и/или в динамическом наблюдении. В классификацию Bethesda в настоящее время введен также термин NILM – no intraepithelial lesion or malignancy, объединяющий норму, доброкачественные изменения, реактивные изменения.

Так как данные классификации используются в практике врача-цитолога, ниже приведены параллели между классификацией Bethesda и классификацией, распространенной в России (Табл. 22). Цитологическое стандартизованное заключениепо материалу из шейки матки (форма № 446/у), утверждено приказом Минздрава России от 24.04.2003 № 174.

Причины получения неполноценного материала различны, поэтому цитолог перечисляет типы клеток, обнаруженные в мазках и по возможности указывает причину, по которой материал признан неполноценным.

Что делать при ASC-US, ASC-H, LSIL, HSIL, AGC в мазке

Экспертами Всемирной Организации Здравоохранения (ВОЗ) разработаны стандарты наблюдения пациенток с заболеванием шейки матки по результатам онкоцитологии. Для обозначения патологий предложены специальные аббревиатуры, и существуют рекомендации для каждого конкретного случая. Их вы можете увидеть в результатах жидкостной цитологии, например.

Читайте также:  Тремор подбородка у ребенка, взрослых причины

Расшифровка цитограммы

NILM (цитограмма без особенностей) – это нормальные показатели эпителия. Все остальные термины подозрительны в плане онкологии и требуют дальнейшего наблюдения и дополнительного обследования.

ASC – атипичные клетки плоского эпителия. Это промежуточное состояние между нормой и интраэпителиальными изменениями. До 17% женщин с таким результатом имеют цервикальную неоплазию (CIN, предраковое состояние эпителия), а у 1 женщины из 1000 обследованных определяется инвазивный раковый процесс по данным биопсии.

ASC-US — плоский эпителий с признаками атипии (злокачественности) неясного значения

При обнаружении этих изменений эпителия предложены следующие варианты дальнейшего ведения пациентки и постановки диагноза.

Обязательно кольпоскопия с прицельной биопсией подозрительных участков, если таковые найдутся. Дальнейшее ведение определяется для каждой пациентки в индивидуальном порядке.

  1. Пап-тест через 4-6 месяцев:
    • если снова обнаружена ASC-US – проводится кольпоскопия, дополненная биопсией;
    • при получении 2 отрицательных мазков последовательно – возврат к обычному скринингу 1 раз в год.
  2. ВПЧ-тест с выявлением высокоонкогенных типов вируса папилломы человека:
    • положительный регламентирует кольпоскопию с иссечением подозрительных тканей;
    • отрицательный – обследование через 1 год.

Если ASC-US выявлены у женщины во время беременности, алгоритм наблюдения аналогичен вышеизложенному. При обнаружении ASC-US в период постменопаузы и сопутствующих атрофических процессах назначается терапия эстрогенсодержащими препаратами (местно с использованием свечей, кремов), а затем обследование с использованием цитологических методов (если нет противопоказаний).

ASC-H – плоский эпителий с атипией, интраэпителиальные изменения высокой степени

При выявлении ASC-H у 40 % женщин обнаруживается тяжелая цервикальная неоплазия (CIN 2 или 3 — HSIL) по данным биопсии. Дисплазия второй и третьей степени не позволяет исключить carcinoma in situ (рак «на месте»). Поэтому не обойтись без прицельной биопсии под контролем кольпоскопии.

Если в гистологическом материале не выявлены предопухолевые изменения, стоит пересмотреть результаты всех предыдущих исследований:

  • заключение изменено – тактика ведения определяется установленным заболеванием;
  • заключение осталось прежним – обследование через полгода и год или ВПЧ-тест через год.

LSIL – плоский эпителий, интраэпителиальные изменения низкой степени

При LSIL ВПЧ-тест не имеет значения, т. к. вирусы папилломы обнаруживаются практически у всех женщин этой категории. Кроме этого, обнаружение LSIL не является достоверным признаком любой стадии цервикальной неоплазии.

В данной категории показана биопсия. С выскабливанием цервикального канала, если при кольпоскопии выявлен 3 тип зоны трансформации (то есть ее не видно со стороны влагалища при осмотре).

В случае LSIL в подростковом возрасте предложены следующие варианты ведения.

  1. Обследование через 3-6 месяцев:
    если вновь обнаружена LSIL – показана кольпоскопия;
    отрицательный мазок – диагностика через полгода.
  2. Кольпоскопия.
  3. Тест на ВПЧ через 1 год:
    • положительный тест на вирус папилломы человека – кольпоскопия;
    • отрицательный ВПЧ-тест разрешает повторное обследование через полгода.

Наблюдение беременных пациенток с LSIL не отличается от алгоритма ведения пациентки при обнаружении тяжелой дисплазии (HSIL).

Если LSIL обнаружены у женщины в период менопаузы, допустима контрольная диагностика через некоторое время: мазок на онкоцитологию и ВПЧ-типирование. Если выявленные изменения находятся в значениях выше ASC-US, ВПЧ-тест положителен, и все это сопровождается атрофическими процессами, следует провести местную терапию эстрогенсодержащими препаратами перед повторным обследованием.

HSIL – интраэпителиальные изменения высокой степени, подозрительные на врастание в подлежащие ткани

При выявлении HSIL в цитологическом исследовании обнаруживается цервикальная неоплазия (CIN) практически у всех пациенток, а у 2% обследуемых выявляется инвазивный раковый процесс. Поэтому HSIL предусматривает только один вариант – проведение кольпоскопии, дополненной биопсией с получением образца эндоцервикса. Иные методы совершенно неприменимы, т. к. выжидательная тактика может привести к плачевным результатам.

Если женщина планирует беременность, и у нее выявляется HSIL, показана биопсия. Результат исследования полученного материала определяет дальнейшую судьбу пациентки.

В случае, если тяжелая дисплазия подтверждена на кольпоскопии в период менопаузы, рекомендуется петлевая эксцизия шейки матки (иссечение пораженных слоев с сохранением непораженных тканей, ПЭЭ) с диагностической целью. Иссеченные ткани отправляются на гистологию. Кроме этого, эксцизия (конизация) рекомендуется в любом случае обнаружения HSIL, когда результат кольпоскопии считается неудовлетворительным или отрицательным.

Обнаружение HSIL при беременности требует проведения кольпоскопического исследования. Если результат кольпоскопии неудовлетворительный (не видно зоны трансформации), то повторная диагностика выполняется через 6-12 недель. Кроме этого, назначается биопсия без взятия образца эндоцервикса, во избежание угрозы для эмбриона или плода.

Конизация с диагностической целью требуется только, когда нельзя быть уверенными в отсутствии злокачественного процесса, в ином случае по предложенному доктором графику проводится жидкостная цитология (или ПАП-тест) и инструментальный осмотр шейки матки. Это обусловлено тем, что риск прогрессирования патологии крайне небольшой, а в послеродовый период заболевание может регрессировать. В любом случае лечением дисплазии необходимо заниматься не ранее, чем после окончания послеродового периода.

AGC – эпителий канала шейки матки с признаками атипии

Железистые клетки с признаками атипии значительно повышают риск цервикальной неоплазии или дисплазии (CIN), как ее еще часто называют. Примерно в половине случаев выявления AGC подтверждается CIN, в 10% — карцинома на месте (в пределах эпителиальных слоев) и распространенный раковый процесс.

В любом случае обнаружения AGC (кроме клеток эндометрия с признаками атипии) обязательно проводится кольпоскопия и делается «щипок», для взятия образцов ткани шейки матки. Кроме этого, проводится аспирационная биопсия эндометрия (внутренней слизистой оболочки матки) или раздельное диагностическое выскабливание, если наблюдаются вагинальные кровотечения в возрасте 35 лет и старше. ВПЧ-тест не проводится у данной категории обследуемых.

Если гистологически признаков неоплазии не выявлено, обязательны кольпоскопия и Пап-тест через 4-6 месяцев. Мониторинг продолжается до получения четырехкратного отрицательного результата анализа.

Если измененные ткани при кольпоскопическом исследовании не выявлены, то есть не понятно, из какого места на шейке брать «щипок». Необходима конизация с последующим гистологическим исследованием полученной ткани.

Ссылка на основную публикацию
Цистит с кровью причины, симптомы, лечение препаратами у женщин
Причины цистита с кровью у женщин и лечение Многие женщины страдают от такого заболевания как цистит. Это заболевание мочевого пузыря...
Циклодинон как принимать при планировании беременности
Как пить циклодинон при планировании долгожданной беременности К сожалению, проблемы с зачатием знакомы многим женщинам. Гинекологи назначают своим пациенткам препарат...
Цикломед цена в Москве от
Цикломед ® (Cyclomed) инструкция по применению Владелец регистрационного удостоверения: Лекарственная форма Форма выпуска, упаковка и состав препарата Цикломед ® Капли...
Цистит у женщин причины, симптомы, современные препараты и лекарства
Цистит у женщин Цистит у женщин – это воспалительное поражение слизистого (реже подслизистого и мышечного) слоя мочевого пузыря с острым...
Adblock detector